Пресноводная рыбка скалярия (Pterophyllum scalare) является южноамериканской цихлидой (Cichlidae), обитающей в Гайана, бассейнах рек Ориноко и Амазонки. В природе, сезон размножения данного вида приходится на январь, когда температура воды поднимается до 28-30 °C. Скалярии очень популярны среди аквариумистов по всему миру, поэтому имеется много информации, касающейся особенностях их разведения и содержания в аквариумах (Axelrod & Shaw, 1967, Pérez, 1984). Тем не менее, вследствие недостатка научных исследований, о ростовых показателях и плодовитости представителей данного вида известно очень мало (Martty, 1977).

Рацион питания сильно влияет на рост и потенцию аквариумных рыбок, при этом жвые корма выступают позитивными факторами развития. Например, Reyes-Bustamante (1999), изучая золотых рыбок (Carassius auratus), бойцовых рыбок (Betta splendens) и гурами (Trichogaster trichopterus), показал, что мальки лучше растут на коловратках (Brachionus plicatilis) и ветвистоусых рачках (Daphnia magna), чем на двух различных смесях из коммерческих сухих кормов.

Аналогичные результаты были получены при использовании живых кормов в отношении скалярий. В частности, Figueroa с коллегами (1977) обнаружил, что представители вида Pterophyllum scalare, питающиеся исключительно рачкам D. pulex, вступают в нерест значительно чаще и продуцируют больше икры с лучшей выживаемостью по сравнению с производителями, которых кормили сухими хлопьевидными смесями.

В данной статье (ссылка на оригинал исследования внизу статьи) представлен количественный анализ плодовитости, ростовых показателей и выживаемости икры и личинок скалярий, выращиваемых в лабораторных условиях и выкармливаемых двумя различными типами живых кормов и одним типом сухого корма. С деталями раннего развития личинок и мальков скалярии читатель может ознакомиться в следующей  статье.

В исследовании принимали участие половозрелые 9-10-ти месячные производители. Эти рыбки являлись вторым поколением, которое размножалось на месте.

Показатели воды
В ходе исследования рыбы содержались в воде. имеющей следующие показатели: температура 24,3-30 °C; pH 7.8-9.0. Качество воды поддерживалось с помощью биофильтрации и подмен каждые 15 дней (первая подмена через 30 дней после запуска аквариума).

Нерест скалярии

Рыбы помещались в 80 литровый аквариум, где естественным образом разделялись на пары. Каждая из пар переносилась в отдельный аквариум, включающий пластиковую платину субстрат, размещенную по диагонали. После нереста икринки инкубировались искусственно. Пластиковые пластины с кладкой переносились в другой аквариум с фильтрацией, в котором рядом с кладкой находился распылитель воздуха.

Измерения
Данные регистрировались в 20 нерестах. В каждой кладке подсчитывалось общее количество икринок, измерялась длина и высота самки, её масса (г). Относительная плодовитость рассчитывалась как отношение числа икринок (z) к массе самки (W): (En=z/W).

Зависимость плодовитости от массы тела рассчитывалась с использованием линии регрессии: число икринок = a + b*W, где W: общая масса, a: y-подъем, b: наклон прямой. Для вычисления оплодотворения подсчитывалось количество личинок: (оплодотворенные икринки/общему числу икринок) x 100 ( Таблица 1).

Кормление мальков скалярии

Сравнивалось влияние трех различных типов кормов на скорость роста мальков в течение 135 дней. Измерялись длина и высота 100 мальков в трех группах, находящихся в отдельных 40 литровых аквариумах.

Рацион A. В течение 10 дней мальков скалярий кормили декапсулированными яйцами артемии (4 яйца/мл), а затем концентрация увеличивалась до 6 яиц/мл. Рыбки птались свободно.

Рацион B. Сбалансированный мелкий хлопьевидный корм «Tetramin» вносился из расчета 6% от массы тела мальков три раза в день.

Рацион C. С рассасыванием желточного мешка малькам давались коловратки (Brachionus plicatilis) в концентрации 10/мл в течение 10 дней; после этого, рачки D. magna 7/мл трижды в день до конца эксперимента.

В целях расчета ростовых показателей каждые 15 дней вылавливалось 10 мальков. Длина и высота особи определялась в камере Горяева, и по мере роста – в стереоскопическом микроскопе. Позднее, мальки достигали более 5 мм в длину, и их развитие фиксировалось с помощью чашки Петри с миллиметровой бумагой на дне. Сырая масса рыбок измерялась с помощью весов Ohaus 480 (цена деления 0,001 г). При этом рассчитывалась разница между получившейся (с рыбкой) и известной массой воды в пробирке.

По истечение 135 дней определялась общая смертность (Z) для 80 личинок/40 литровом аквариуме по методу Beverton & Holt, 1959, описанному у Ricker, (1975): Nt=N0 e –Z t,
где N0 и Nt – число рожденных мальков в начале и в конце периода разведения (t). Выживаемость (S) икринок и мальков рассчитывалась по формуле: S=Nt/N0, а смертность M=1- S, выражалась в процентах. Использовался статистический тест Tukey и программа Excel.

Результаты
Плодовитость и выживаемость икринок
В таблице 1 видно, что максимум икры (1082 единицы) производила самка массой 50 г, длиной 22,0 см и высотой 28,8 см, в то время как минимум икры (234 единицы) – у особи массой 20 г, длиной 12,5 см и высотой 15 см. Средний размер кладки составлял 468,8 (стандартное отклонение ±193.97) икринок на особь. Относительная плодовитость варьировала от 11,44 до 21,64 икринок на грамм массы самки, при этом среднее значение составило 16,39 (стандартное отклонение±2.79).

Число икры возрастало на 20,69 единиц на каждые единицу массы (Рисунок 1). Наблюдалась корреляция между общим числом икринок к числу оплодотворенных икринок: общее число икринок = 0,9464 (оплодотворенные икринки) + 6,3618; где R²=0.9924, n=20. Выживаемость личинок варьировала от 87 до 100% (в среднем 96% в течение 60 дней).

Ростовые показатели
Длина, высота и масса мальков, рожденных с 1 ноября по 15 марта и выкормленных тремя типами рациона, представлены на рисунке 2. Наивысшая скорость роста достигалось при кормлении рационом A (длина 6,3 см, высота 5,9 см, масса 3,62 г), затем следовал рацион C (длина 5,15 см, высота 5,10 см, масса 3,00 г), и, наконец, наихудшие результаты наблюдались при кормлении смесью B (длина 4,81 см, высота 4,79 см, масса 2,8 г). Тест Tukey подтвердил статистически значимое отличие ростовых показателей, достигаемых на рационе A, по сравнению с рационами B и C. В свою очередь, различия в скорости роста на смесях B и C не были статистически значимы (P>0,50).

Как указано выше, более крупные самки производили больше потомства. Не смотря на статистически значимые различия ростовых показателей от типа корма, стоит отметить, что стоимость яиц артемии и коловраток выше по сравнению со сбалансированным инертным сухим кормом (тип B).

Смертность
Общая смертность для всех типов кормов составляла 2 малька/мл в 40 литровом аквариуме в течение 135 дней (Рисунок 3); немедленная общая смертность составляла 0,0026, 0,0043, и 0,0040, соответственно; на рационе A смертность составила 33,8%; на рационе C – 43,8%; на рационе B – 50,0%. Наилучшая выживаемость наблюдалась при кормлении мальков декапсулированными яйцами артемии (66,25%).

Обсуждение
В данном исследовании температура воды соответствовала значениям, которые рекомендованы для разведения скалярий (Martty & Couto, 1976). Согласно Aries (1972), температура для размножения скалярий должна составлять 28-30 °C.

Swingle (1961) рекомендовал диапазон pH 6.5-9, при этом выход за нижнюю и верхнюю границы нормы могут привести к прекращению размножения вида Pterophyllum scalare. Однако Axelrod (1976) докладывал о том, что в реке Амазонке скалярии предпочитают значения pH ниже 7 единиц. В рамках данной работы pH составлял 7.8-9.0

Тип корма оказывает выраженное влияние на развитие мальков. С помощью специального индекса Shirota (1970) связывал размер рта мальков морских видов рыб с размером добычи. Lavens & Sorgeloos (1996) и Coutteau (1996) указывали на то, что мальки рыб длиной 2-3 мм охотятся на 300 мкм организмы, тогда как мальки длиной 3-5 мм – на 1 мм организмы. Rottmann (1989) заключил, что взрослые моины (700-1000 мкм) крупнее науплий артемии (500 мкм) и в три раза крупнее коловраток. D. magna в два раза крупнее рачков рода Moina, поэтому мальков скалярии старше 10 дней лучше кормить D. magna.

В коммерческом секторе рыбоводства, коловратки являются стартовым кормом для молоди 2-20 дневного возраста; в действительности, на сегодняшний момент нет достойной замены данному микрочервю (Maeda & Hino 1991).

Watanabe et al. (1983) и Tamaru et al. (1991) указывали на то, что молодь длиной 2-3 мм необходимо кормить коловратками в течение первых 30 дней развития, вплоть до достижения ими 7-10 мм длины, а затем переходить на ветвистоусых раков, копепод или науплий артемии.

Как только малек достигает 10 мм длины, в качестве пищи может выступать рыбная мука, вплоть до достижения 30-50 мм длины. Degani (1993) обнаружил, что молодь скалярий лучше растет при добавлении в рацион живой артемии в качестве источника дополнительных белков. Это свидетельствует о наличии в составе артемии микроэлементов, отсутствующих в искусственных кормовых смесях. В данной статье наилучшая выживаемость и скорость роста достигается при кормлении рыб декапсулированными яйцами артемиии.

Figueroa et al. (1977) показал, что самки скалярий, питающиеся D. pulex, метают 857-959 икринок, тогда как на рационе «Wardley» (сбалансированный сухой корм) – лишь 363 икринки. Выживаемость личинок на рационе D. pulex составляет 91% против 62% на «Wardley». В данной статье использование аналогичного по составу корма «Tetramin» привело к сравнительно низкой скорости роста молоди и высокой смертности по сравнению с живым кормом.
——
Ortega-Salas A.A., Cortés G.I., Reyes-Bustamante H. Fecundity, growth, and survival of the angelfish Pterophyllum scalare (Perciformes: Cichlidae) under laboratory conditions. Rev Biol Trop. 2009 Sep;57(3):741-7.
[user]
Aries, S.S. 1972. Discus & Scalare. Ediciones Littec, Buenos Aires, Argentine.

Axelrod, H. R. 1976. Breeding aquarium fishes. T.F.H. Publications, Neptune City, New Jersey, USA.

Axelrod, H. R, & S.R. Shaw. 1967. Breeding aquarium fishes. T.F.H. Publications, Neptune City, New Jersey, USA.

Beverton, R.J.H. & S.J. Holt. 1959. A review of the life span and mortality rates of fish in nature, and their relation to growth and other physiological characteristics. CIBA Found. Colloq Age. 5: 142-177.

Coutteau, P. 1996. Microalgae, p. 7-47. In Manual on the production and use of live food for aquaculture. FAO Fish. Tech. Pap. 361. FAO, Rome, Italy.

Figueroa, T.J., R.G. Berrum & F.J. Luna. 1977. Reproducción del pez ángel Pterophyllum scalare var. Perlada, p. 109. In V Congreso Nacional de Ictiología, Mazatlán Sinaloa, Mexico.

Degani, G. 1993. Growth and body composition of juveniles of Pterophyllum scalare (Lichtenstein) (Pisces: Cichlidae) at different densities and diets. Aquaculture and Fisheries Management 24: 725-73.

Lavens, P. & P. Sorgeloos. 1996. Manual on the production, and use of live food for aquaculture. FAO, Fish. Tech. Pap. 361. Rome, Italy.

Maeda, M. & A. Hino. 1991. Environmental management for mass culture of the rotifer, Brachionus plicatilis, p.125-134. In Rotifer and micro-algae culture system. W. Fulks & K. L. Main (eds.). Proceedings of a US-Asia Workshop. The Oceanic Institute, Honolulu, Hawaii, USA.

Martty, A.H. 1977. Alimentación de peces ornamentales. Albatros, Buenos Aires, Argentine.

Martty, A.H. & D.D. Coutto. 1976. Peces tropicales y el novicio. Albatros, Buenos Aires, Argentine.

Pérez, S.L.A. 1984. Piscicultura. El manual moderno.

Reyes-Bustamante, H. 1999. Evaluación y optimización de la producción de microalgas del rotífero Brachionus plicatilis y del cladócero, Daphnia magna bajo diferentes condiciones de cultivo. Tesis Doctoral. Colegio de Ciencias y Humanidades, Unidad Académica de los Ciclos Profesionales y de Posgrado, Universidad Nacional Autónoma de México, Mexico.

Ricker, W.E. 1975. Computation, and interpretation of biological statistics of fish populations. Bull. Fish. Res. Canada 191.

Rottmann, R.W. 1989. Daphnia culture. Florida.Aquarium Farms Inc. 1: 99-123.

Shirota, A. 1970. Studies on the mouth size of fish larvae. Bull. Japan. Soc. Sci. Fish. 36: 353-368.

Swingle, H.S. 1961. Relationships of pH of pond waters to their suitability for fish culture. Proceed. Pac. Sci. Cong. 9: 72-75.

Tamaru, C.S., Lee, C. & H. Ako. 1991. Improving the larval rearing of striped mullet (Mugil cephalus) by manipulating quantity and quality of the rotifer, Brachionus plicatilis, p. 89-104. In Rotifer and micro-algae culture system, W. Fulks & K. L. Main (eds.). Proceedings US-Asia Works, The Oceanic Institute, Hawaii, USA.

Watanabe, T., C. Jitajima & S. Fujita. 1983. Nutritional value of live food organisms used in Japan for mass culture of fish. Rev. Aqua. 34: 115-143.
[/user]