Плавниковая гниль часто выделяется в отдельное заболевание, хотя она скорее является одним из компонентов системной бактериальной инфекции.

В данном случае невозможно выделить одного возбудителя, так как в патогенез плавниковой гнили вовлечено несколько видов бактерий, относящихся к родам Aeromonas, Pseudomonas, Vibrio и Flexibacter [Latremouille, 2003].

Тем не менее, более детальное изучение зараженных рыб со специфическими симптомами позволило сузить круг предполагаемых возбудителей.

Возбудитель плавниковой гнили

В одной из работ биологи Университета Суэцкого канала в Египте провели анализ образцов тканей 170 больных рыб (90 тиляпий, 50 клариасов и 30 особей обыкновенного карпа). Все особи были заражены естественным путем и имели кровоизлияния, прогрессирующее разрушение и слипание плавников, особенно, хвостового и спинного. В ряде случаев у них наблюдались отеки и шелушение чешуи [Enany M.E et al. Bacterial causes of fin rot in some fresh water rot in some fresh water fishes].

У этих рыб обнаружено 468 бактериальных изолятов, относящихся к 8 родам и видам: A. hydrophila (198), P. fluorescens (102), Streptococcus sp.(36), F. columnaris (36), Klebsiella sp. (48), E. coli (24), Proteus sp., (12), Shigella sp. (12).

Изолят бактерии — субпопуляция бактерий, выделенная из общей популяции по определённым признакам.

Вид рыб	Число изолятов	Род бактерии								Всего	%
		Aeromonas	Pseudomonas	Flecibacter	Klebsiella	Streptocoс	E. Coli	Proteus	Shegella
Тиляпия	90	105 (42.68%)	54 (21.95%)	19 (7.73%)	25 (10.16%)	18 (7.32%)	10 (4.06%)	8 (3.25%)	7 (2.85%)	246	18.1
Клариас	50	59 (43.38%)	30 (22.06%)	11 (8.09%)	14 (10.29%)	9 (6.62%)	6 (4.41%)	3 (2.21%)	4 (2.94%)	136	10.0
Карп	30	34 (39.53%)	18 (20.93%)	6 (6.98%)	9 (10.47%)	9 (10.47%)	8 (9.30%)	1 (1.16%)	1 (1.16%)	86	6.3
Всего	170	198 (42.3%)	102 (21.8%)	36 (7.7%)	48 (10.3%)	36 (7.7%)	24 (5.1%)	12 (2.6%)	12 (2.6%)	468	34.4

Пытаясь ответить на вопрос о патогененезе плавнковой гнили, авторы работы получили следующие результаты распределения бактериальных изолятов в тканях и органах больных рыб:

Изоляты	Рыба	Всего	Повреждения плавников и кожи		Печень		Почки		Жабры		Селезенка		Мышцы		Яичники		Жидкость асцита
	Виды	изоляты	Число	%	Число	%	Число	%	Число	%	Число	%	Число	%	Число	%	Число	%
A. hydrophila	Тиляпия	105	29	37.62	19	18.1	9	8.59	18	17.14	6	5.70	13	12.37	7	6.67	4	3.81
	Клариас	59	15	25.42	12	20.39	5	8.46	11	18.64	4	6.77	6	10.17	4	6.77	2	3.39
	Карп	34	10	29.41	5	14.71	4	11.76	7	20.59	2	5.88	5	14.71	1	2.94	—	—
P.fluorescens	Тиляпия	54	16	29.63	9	16.67	16	29.63	3	5.56	—	—	3	5.56	7	12.96	—	—
	Клариас	30	10	33.33	6	20.00	9	3.00	2	6.67	—	—	1	3.33	2	6.67	—	—
	Карп	18	4	22.22	3	16.67	5	27.78	1	5.56	—	—	2	11.11	3	16.67	—	—
F.columnaris	Тиляпия	19	6	31.58	—	—	6	31.58	7	36.84	—	—	—	—	—	—	—	—
	Клариас	11	4	36.36	—	—	5	45.45	2	18.18	—	—	—	—	—	—	—	—
	Карп	6	2	33.33	—	—	1	16.67	3	50.00	—	—	—	—	—	—	—	—

По таблице видно, что прогрессивное развитие плавниковой гнили обусловлено видами Aeromonas hydrophila, Pseudomonas fluorescens и Flecibacter columnaris. Помимо повреждения плавников и хвостового стебля, бактерии Aeromonas hydrophila и Pseudomonas fluorescens проникали во внутренние органы (печень, мышцы, яичники, почки). В свою очередь, Flecibacter columnaris отмечался только на внешних покровах и жабрах рыб.

Похожие результаты получены при исследовании Кумжи (Salmo trutta caspius) [Golchin et al., 2014]. Образцы плавников рыб, подвергшихся эррозии, исследовались с помощью диагностического теста API20E на присутствие грамотрицательных энтеробактерий. Результаты позволили идентифицировать вид Aeromonas hydrophila в 100% случаев, а также Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas aeruginosa и Pseudomonas putida в 36.84, 31.57 и 21.05% случаев, соответственно. Кроме того, 10.25% бактерий рода Pseudomonas остались не определенными.

Существуют ряд других работ, в которых представители рода Aeromonas и Pseudomonas предполагаются в качесте ключевых игроков в патогенезе плавниковой гнили и сопутствующих изменений в организме рыб. Видовой состав возбудителей разнообразен: A. hydrophyla, A. sobria, A. caviae, A. veronii, Pseudomonas aeruginosa и P. fluorescens [Taylor, 2003; Neumann, Ploger, 1980; Shayo et al., 2012; Miranda, Zemelman, 2002; Saha, Pal, 2002; Naderi-Maivan, 2003].

Тем не менее, более распространенными считаются Aeromonas hydrophyla и Pseudomonas fluorescens.

Aeromonas hydrophila

является неспорообразующей грамотрицательной факультативно анаэробной палочкой (т.е. могут развиваться как в безкислородной, так и в кислородной среде). Она имеет 0.3-1.0 мкм в ширину и 1.0-3.0 мкм в длину. Полярный жгутик позволяет ей двигаться. Эта палочка широко распространена в окружающей среде, в том числе, почве, морской и пресной воде, включая природные водоемы и бассейны. Бактерия обнаружена у животных и человека в 1950-х годах и является первым открытым видом аэромонад. Она устойчива к большинству распространенных антибиотиков и холодной температуре (может развивать при 4 градусах, но лучше 25-28 градусов).

Aeromonas hydrophila считается условно-патогенным микроорганизмом, потому что он распространен в аквакультуре и обычно не вызывает заболеваний у здоровых, находящихся в хороших условиях, рыб. С другой стороны, отдельные штаммы данного вида обладают различной вирулентностью и поэтому могут оказывать различное давление на иммунитет рыб.

Заражение Aeromonas hydrophila может вызывать септицемию за счет выделения эндотоксина.

Pseudomonas fluorescens

— грамотрицательная подвижная палочковидная бактерия. Является облигатным аэробом, хотя некоторые штаммы могут использовать нитрат в качестве акцептора электронов в клеточном дыхании. Бактерия выделяет желто-зелёный флюоресцирующий в ультрафиолетовых лучах пигмент пиовердин. Являясь условно-патогенным микроорганизмом, Pseudomonas fluorescens повсеместно встречается в почве, воде, испорченной пище. Оптимальная температура для роста — 25-30 градусов.

Факторы риска и заражение

1. Источник инфекции. Источники воды с высокой органической нагрузкой, грязной водой; больные рыбы и лягушки; переносчиками инфекции могут быть здоровые и переболевшие рыбы.
2. Заражение происходит только горизонтально через желудочно-кишечный тракт (заглатывание), открытые раны хозяина, через воду и при посредничестве паразитов (пиявки).
3. Неблагоприятная среда — высокая плотность посадки, стресс, высокие перепады температуры, грубое обращение с рыбой, низкая концентрация кислорода, высокая органическая нагрузка. Слишком низкая и слишком высокая температура может стать причиной повышения восприимчивости рыб к Aeromonas hydrophila и Pseudomonas fluorescens, соответственно.

В условиях искусственного заражения рыб отдельными изолятами бактерий, патоген A.hydrophila вызывает высокую смертность (87-100%), за ним следуют P.fluorescens (50%) и F.columnaris (37.5%) [Enany M.E et al. Bacterial causes of fin rot in some fresh water rot in some fresh water fishes].

Симптомы плавниковой гнили

Системное инфекция, вызванная A.hydrophila и P.fluorescens, приводит к разрушению покровов тела и внутренних органов.

Отмечаются кровоизлияния, некроз внутренних органов и/или кожи и мышц, септецимия, поверхностные круглые сероватые язвы, кровоизлияния на плавниках, пучеглазие. Вследствие повреждения кожи и стресса, рыба теряет окраску.

Наблюдаются слипание и эрозия плавников, ерошение отдельных чешуй.

Можно сказать, что разрушение плавников является одним из первых, наиболее заметных симптомов течения бактериальной инфекции. Исследование зараженных особей после смерти показало асцит брюшной полости, увеличение и уплотнение печени, почек, селезенки и кишечника, растежение и уплотнение плавательного пузыря.

Профилактика и лечение плавниковой гнили

Это бактериальное заболевание является следствием плохого ухода за рыбками. Сниженный иммунитет и высокая концентраця условно-патогенной микрофлоры может привести к вспышке инфекции.

Профилактика от плавниковой гнили предполагает соблюдение санитарных норм и требований к содержанию рыбы. В настоящее время вакцины против этого заболевания не разработаны.

Тест на чувствительность штаммов бактерий A. hydrophila, P.fluorescens и F.columnaris  показал их высокую воспримчивость к канамицину и налидиксовой кислоте (таблица снизу).

Помимо них проводиться лечение окситетрациклином (50-75 мг/кг рыбы в день в течение 10 дней). В Европе также практикуется лечение инъекциями левомицетина (хлорамфеникола) [www.koiquest.co.uk/anti1x.pdf].

Иногда в аквакультуре используются ванны с концентрацией левомицетина 2 мг/л до 5-10 мг/л, либо окситетрациклина — 10 — 100 мг/л в зависимости от вида рыб [Kasagala, Pathiratne, 2008].

Таблица чувствительности бактериальных изолятов A. hydrophila, P.fluorescens, F.columnaris к ряду антибиотиков:
[user]

Изоляты

Рыба

Всего

Антибиотики

Виды

изоляты

AMX

C

CL

D

E

K

NA

N

S

G

TE

SXT

A. hydrophila

Тиляпия

105

+2

+2

+3

+3

+1

+4

+4

+3

+1

—

+3

+2

Клариас

59

+1

+2

—

+1

+1

+3

+4

+3

+3

—

+3

+3

Карп

34

+2

+2

+1

+2

+1

+4

+4

+4

—

—

+3

+1

P.fluorescens

Тиляпия

54

—

+2

+2

+2

—

+2

+4

+4

+3

+2

+2

+3

Клариас

30

+2

+2

+2

+1

+1

+1

+3

+4

+3

+1

+2

+3

Карп

18

+1

+2

+2

+1

—

+2

+3

+3

+2

+2

+3

+2

F.columnaris

Тиляпия

19

+1

—

+1

—

—

+4

+4

—

+1

—

+4

+2

Клариас

11

—

+1

—

+1

—

+3

+4

+1

+1

—

+4

+1

Карп

6

—

—

—

—

—

+4

+4

—

+1

—

+4

+2

[/user]
AMX = Амоксициллин; C = Хлорамфеникол; CL = Колистин; D = Доксициклин; E = Эритромицин; K = Канамицин; N = Неомицин; S = Стрептомицин; G = Сульфонамид; NA = Налидиксовая кислота; SXT = Триметоприм сульфонамид; Te = Тетрациклин

Можно ли лечить плавниковую гниль бициллином?

Бициллин является торговым названием бензатина бензилпенициллина. Этот природный бета-лактамный антибиотик получают из плесневого гриба Penicillium chysogenum. Согласно исследованию (Enany et al., Bacterial causes of fin rot in some fresh water rot in some fresh water fishes), бактерии A.hydrophila, P.fluorescens и F.columnaris обладают высокой сопротивляемостью к родственному полусинтетическму бета-лактамному антибиотику из группы пенициллинов, Амоксициллину. Поэтому можно говорить о том, что использование бициллина нецелесообразно.

Можно ли лечить плавниковую гниль солью?

Как Aeromonas hydrophila, так и Pseudomonas fluorescens толерантны к высокому содержанию соли. Они могут жить в солоноватой и морской воде, и заражать морские виды рыб. Поэтому использование повареной соли против них нецелесообразно. Поваренная соль поможет снизить потери соли организмом рыб, покровы которых разрушены.

Часто рекомендуемое повышение температуры не только не поможет справиться с этими видами бактерий, но скорее ускорит их развитие, потому что оптимальная температура для деления Aeromonas hydrophila — 24-28 градусов Цельсия, а Pseudomonas fluorescens — 25-30 градусов Цельсия.
——
Latremouille D.N. Fin Erosion in Aquaculture and Natural Environments. Reviews in Fisheries Science, 11(4) : 315-335. 2003
Enany M.E, ElSayed M.E, Diab A.S, Hassan S.M, El–Gamal R.M. Bacterial causes of fin rot in some fresh water rot in some fresh water fishes. ag.arizona.edu/azaqua/ista/ista6/ista6web/presentation/p229.pdf
Golchin Manshadi A., Assareh R. Bacterial Study of Fin Rot in Brown Trout by API20E. Pakistan Journal of Biological Sciences, 17: 434-438. 2014
Taylor, P.W., 2003. Multiple antimicrobial resistance in chronic bacterial infection of koi carp. North Am. J. Aquacult., 65: 120-125
Neumann, W. and W. Ploger, 1980. Examination in Resistance Tests of Some Strain of Aeromonas hydrophila punctata Group Isolated from Carp. In: Fish Disease, Third COPRAQ Cooperative Program of Research on Aquaculture Session, October 23-26, 1979, Munich, Federal Republic of Germany, Ahne, W. (Ed.). 3rd Edn. Springer-Verlag, Berlin, Heidelber
Shayo S.D, Mwita C.J, Hosea K.M. Virulence of Pseudomonas and Aeromonas bacteria recovered from. Oreochromis niloticus (Perege) from Mtera hydropower Dam; Tanzania. Annals of Biological Research, 3(11) : 5157-5161. 2012 Miranda, C.D. and R. Zemelman, 2002. Bacterial resistance to oxytetracycline in Chilean salmon farming. Aquaculture, 212: 31-47
Saha, D. and J. Pal, 2002. In vitro antibiotic susceptibility of bacteria isolated from EUS-affected fishes in India. Lett. Applied Microbiol., 34: 311-316
Naderi-Maivan, G.H.M., 2003. Investigating cases of fin rot by motile Aeromonas of grass carp fish in some province workshops. DVM Thesis, Faculty of Veterinary Medicine, Tehran University
K.Kasagala, Asoka Pathiratne. Effects of waterborne chloramphenicol and oxytetracyclene exposure on haematological parameters and phagocytic activity in the blood of koi carp, cyprinus carpio. pp. 283-296. In Bondad-Reantaso, M.G., Mohan, C.V., Crumlish, M. and Subasinghe, R.P. (eds.). Diseases in Asian Aquaculture VI. 2008