Тетраодон нигровиридис

Кормление молодняка Tetraodon nigroviridis, 6 февраля 2006 года; (фото: Tyler Jones).
Кормление молодняка Tetraodon nigroviridis, 6 февраля 2006 года; (фото: Tyler Jones).

Представители этого распространенного вида населяют воды Индии, Шри Ланки, Мьянмы, Таиланда, Вьетнама, Малайзии, Индонезии и Филиппин. Средой обитания являются солоноватые воды устьев рек, пресноводные реки, ручьи, озера и топи.

Tetraodon nigroviridis (семейство Tetraodontidae) хорошо себя чувствует в растительном аквариуме с песочным грунтом, множеством коряг и ветвей, скрывающих рыбку. С целью рассеивания света и затемнения емкости сверху можно добавить поверхностные растения. В свою очередь, мягколиственные растения необходимо исключить, потому что они обычно сильно покусываются рыбками. Так как тетраодон любит плавать, в аквариуме должно быть открытое пространство.

Хотя особи часто рассматриваются как пресноводный вид, они дольше живут в солоноватой воде (плотность 1,005).

Температура: 24-28°C
pH: 7.5-8.5
Жесткость: 10-20°H

Рацион питания
В природе Тетраодон нигровиридис поедает моллюсков, ракообразных, других беспозвоночных, некоторые растения, а также чешую и плавники рыб. В аквариуме пищей станут улитки, черви и другие живые и замороженные корма. Для стачивания зубов в рационе всегда должны присутствовать моллюски с раковинами, ракообразные с панцирем.

Поведение и совместимость
Может содержаться в общем аквариуме с подвижными рыбками. Медлительные и вуалевые рыбки быстро лишаться своих плавников. С возрастом некоторые тетраодоны становятся более кровожадными. По отношению друг к другу тетраодоны проявляют агрессию, поэтому в небольшом аквариуме лучше ограничиться одной особью.

Взрослые экземпляры достигают длины 17 см. Половой диморфизм не выражен.

Размножение
О репродуктивной биологии Тетраодона нигровиридис известно мало. Согласно одного доклада [Jaillon et al., 2004], выращивание вида T. nigroviridis практикуется в прудах вдоль рек их естественного ареала обитания. Однако детали солевого режима и других параметров воды неизвестны. В сети опубликованы единичные недостоверные сведения о разведении рыбок в аквариуме. По этой информации, нерест произошел в солоноватой воде, икринки откладывались на субстрат, и самец охранял кладку и личинок. Период инкубации составил 3 дня. После вылупления мальки некоторое время находились на дне в ямке, выкопанной самцом [Riehl and Baensch, 1991].

В 2007-2008 годах с целью искусственного разведения Тетраодона нигровиридис в лаборатории Тропической аквакультуры Флоридского университета были приложены серьезные усилия. Проводились серии экспериментов с парами или трио (два самца и одна самка), помещенных в аквариумы с морской, солоноватой или пресной водой, различными типами субстрата для нереста (песок, гравий, искусственные растения, трубы ПВХ). Кроме того, нерест запускался инъекциями Хорулона (человеческий хорионический гонадотропин, ХГЧ); Оваприма (гонадотропин-рилизинг гормон лососевых) и Домперидона, антагониста дофамина; экстракта гипофизарного гормона карпа. Эти препараты активно используются для индукции овуляции и стимуляции различных видов рыб. Некоторые тетраодоны после инъекции приступали к нересту. Исследователи пытались получить потомство от рыбок естественным путем. Однако, не смотря на готовность производителей к нересту и зрелость ооцитов, икрометания и нереста не произошло [Watson et al., 2009].

Запросы на особей Tetraodon nigroviridis вынуждают искать новые пути преодоления бесплодия в лабораторных условиях. Методы внутрибрюшинной или внутримышечной инъекций гормонов, которые повсеместно используются для стимуляции рыб, оказываются неэффективными для Тетраодона нигровиридис. Кожа иглобрюха толстая, эластичная и имеет на брюшной стороне многочисленные шипики. Именно эта особенность позволяет рыбкам раздуваться до 3-4 объемов тела. Игольная инъекция мелкого тетраодона в условиях прочной кожи сильно травмирует особь.

На сегодняшний момент практикуется метод биопсии икринок, когда перед инъекцией гормона и индукцией овуляции, проверяют зрелость женских гамет. В яйцевод вставляется катетер, и из яичника извлекаются икринки.

С целью искусственного разведения Тетраодона нигровиридис авторы одного из исследований модифицировали методику [Watson et al., 2009]. Согласно им, через катетер к яичнику может доставляться гормон-индуктор овуляции. При этом отпадает необходимость в инъекции рыбок.

Далее следует методика орошения яичников и протокол размножения
[user]
Степень созревания ооцитов исследователи проверяли с помощью биопсии яичника силиконовой трубкой (0,76 мм диаметр кончика и 1,65 диаметр основания), закрепленной на 1-мл шприце. Перед операцией самки накротизировались 150 мкг/кг MS-222. зрелыми считались особи, у которых более 50% извлеченных икринок демонстрировали миграцию макронуклеуса в направлении к микропиле. Зрелость семенников определялась выдавливанием спермы из самцов.

Для полного орошения яичников (лаваж яичников) авторы работы вводили самкам (масса 9-10 граммов) через яйцевод Хорулон в концентрации 3 мкг/кг массы тела (3000 международных единиц) с помощью силиконовой трубки (0,64 мм диаметр кончика и 1,19 диаметр основания), закрепленной на 1-мл шприце. Затем самки переносились в аквариум с морской водой (соленость 33 ppt; Instant Ocean®) температурой 26 °C. Поводом к использованию морской воды послужили экспериментальные данные, согласно которым подвижность и продолжительность жизни сперматозоидов гораздо выше в морской воде, чем в солоноватой или пресной. Момент икрометания проверялся через 36 часов после обработки.

Сперма собиралась 1-мл шприцом из генитальной поры после высушивания самца фильтровальной бумагой.
Икринки и сперма смешивались в чашке, а затем вносилось 10 мл морской воды. ополодотворенная икра переносилась в 38 литровый аквариум с морской водой, высокой степенью аэрации и температурой 27,3 °C.

Спустя 36 часов овулировали все самки. На одну особь приходиось 8000 икринок массой 1,64 грамма. Выживаемость и степень оплодотворения составили более 90%.
[/user]

Эмбрионы T. nigroviridis через 73 часа после оплодотворения, непосредственно перед вылуплением (слева); личинка через 24 часа после вылупления, с желточным мешком и самостоятельно не питается
Эмбрионы T. nigroviridis через 73 часа после оплодотворения, непосредственно перед вылуплением (слева); личинка через 24 часа после вылупления, с желточным мешком и самостоятельно не питается

Таким образом, условия аквариума не позволяют размножаться этому виду естественным путем. Не исключено, что одной из причин этого является утрата токсичности домашними особями.

Дополнительная информация
T. nigroviridis часто путается с T.fluviatilis и T. schoutedeni. При сравнении с T.fluviatilis Тетраодона нигровиридис можно отличить по более округлой форме тела и отсутствию шипов на брюшке (присутствуют у T. schoutedeni). Покупку необходимо совершать очень внимательно, потому что T.fluviatilis облигатный обитатель солоноватых вод.

 

На видео запечатлены особи видов Tetraodon fluviatilis и Tetraodon nigroviridis. Различие цветового паттерна на лицо.

Tetraodon nigroviridis является рыбкой с самым маленьким геномом среди позвоночных животных (350 мегабаз). Геном рыбок был секвенирован в 2004 году [Jaillon et al., 2004]. Структура генов Тетраодона нигровиридис схожа с геномом человека и данио рерио. Она характеризуется короткими интронами и небольшими интергенетическими областями. Геном рыбки очень компактный, в 8 раз меньше человеческого и в 5 раз меньше генома данио рерио. Это обстоятельство делает вид Tetraodon nigroviridis подходящим объектом генетических исследований, которые раскроют функции отдельных генов у других видов животных.

У диких представителей вида Tetraodon nigroviridis из органов и тканей выделена смесь паралитических ядов моллюсков (PST), включающая сакситоксин и декарбамоилсакситоксин. У особей, выращенных в неволе, эти яды отсутствуют. Интересно, что зеленый тетраодон обладает устойчивостью лишь к сакситоксинам. Введение другого знаменитого токсина рыб фугу — тетродотоксина, в течение 3-4 часов вызывает гибель рыбок (подробнее об этом в статье).
——
www.seriouslyfish.com/species/tetraodon-nigroviridis/
www.fishbase.org/summary/7763
Jaillon O, Aury J.M, Brunet F, Petit J.L, Stange-Thomann N, Mauceli E, Bouneau L, Fischer C, Ozouf-Costaz C, Bernot A, Nicaud S, Jaffe D, Fisher S, Lutfalla G, Dossat C, Segurens B, Dasilva C, Salanoubat M, Levy M, Boudet N, Castellano S, Anthouard V, Jubin C, Castelli V, Katinka M, Vacherie B, Biemont C, Skalli Z, Cattolico L, Poulain J, De Berardinis V, Cruaud C, Duprat S, Brottier P, Coutanceau J.P, Gouzy J, Parra G, Lardier G, Chapple C, McKernan KJ, McEwan P, Bosak S, Kellis M, Volff J.N, Guigo R, Zody M.C, Mesirov J, Lindblad-Toh K, Birren B, Nusbaum C, Kahn D, Robinson-Rechavi M, Laudet V, Schachter V, Quetier F, Saurin W, Scarpelli C, Wincker P, Lander ES, Weissenbach J, Roest Crollius H. Genome duplication in the teleost fish Tetraodon nigroviridis reveals the early vertebrate proto-karyotype. Nature. 431 (7011) : 946-57. 2004.
Riehl, R., Baensch, H.A., 1991. Aquarium Atlas, vol. 1. Mergus-Verlag Hans A. Baensch, Germany
Watson C.A, Hill J.E, Graves J.S, Wood A.L, Kilgore K.H. Use of a novel induced spawning technique for the first reported captive spawning of Tetraodon nigroviridis. Mar Genomics. 2(2) : 143-6. 2009

Похожие статьи:

Как иглобрюх получил свой «клюв»

Определение пола Каринотетраодона траванкорикуса

Разведение свинорылого тетраодона

Кормление иглобрюха

Улитки на корм тетраодонам

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

пятьдесят восемь ÷ двадцать девять =